What is the purpose of the electrophysiology?

Electrofisiología: El Lenguaje Eléctrico Neuronal

Valoración: 4.11 (4725 votos)

La electrofisiología es una herramienta indispensable en el campo de la neurociencia. Permite el estudio y la caracterización directa del sistema nervioso, de las neuronas y las células gliales, y de su capacidad intrínseca para transmitir y recibir corrientes eléctricas. Fundamentalmente, implica la medición de corrientes eléctricas y diferenciales de voltaje a través de las proteínas de la superficie de una sola célula, como los canales iónicos, o la medición de las propiedades cambiantes de una corriente que atraviesa un órgano completo.

Tradicionalmente, esto se lograba utilizando electrodos simples, que se colocaban en células individuales en regiones de interés, permitiendo la estimulación eléctrica en una región seguida de la detección de picos en otra. Sin embargo, los avances tecnológicos han llevado a la creación de arrays de multielectrodos (MEAs) para medir potenciales de acción extracelulares, posibilitando la medición simultánea de cientos de neuronas y facilitando el análisis de redes. Esto proporciona una visión más completa y compleja de las propiedades electrofisiológicas del cerebro.

What are electrophysiological techniques in neuroscience?
These techniques involve recording electrical potentials in specific areas of the central or peripheral nervous system to analyze and quantify data related to neurotoxicity and functional disturbances.
Índice de Contenido

Métodos Clave en Electrofisiología

La electrofisiología neuronal emplea diversas técnicas para capturar la actividad eléctrica. Las más relevantes incluyen:

  • Electrodos Simples: Un enfoque clásico que permite registrar la actividad eléctrica de una única célula o un pequeño grupo de ellas.
  • Arrays de Multielectrodos (MEAs): Dispositivos que consisten en múltiples electrodos dispuestos en una matriz, permitiendo el registro simultáneo de la actividad eléctrica de cientos o incluso miles de neuronas. Esta técnica es invaluable para estudiar la dinámica de las redes neuronales.
  • Patch Clamping: Una técnica sofisticada que permite a los investigadores medir las corrientes iónicas a través de canales individuales en la membrana celular o registrar la actividad eléctrica de toda la célula (modo de célula completa). Es crucial para entender la función de los canales iónicos y los receptores.

Estas herramientas han demostrado ser esenciales en la validación de modelos complejos como los organoides cerebrales.

Aplicaciones y Descubrimientos

La electrofisiología ha impulsado numerosos descubrimientos en neurociencia. Una aplicación destacada es la validación de los organoides cerebrales como modelos que recapitulan eventos in vivo. Se han utilizado enfoques de patch clamping para confirmar la presencia de neuronas funcionalmente maduras en organoides cerebrales de tres meses, detectando trenes de picos sensibles a tetrodotoxina (y corrientes asociadas de Na+ y K+) después de la estimulación. Propiedades similares también se identificaron en organoides de prosencéfalo.

Curiosamente, muchos parámetros electrofisiológicos (incluido el potencial de membrana, la resistencia y la capacitancia) fueron sorprendentemente similares entre los organoides y las neuronas de la placa cortical medidas en cortes organotípicos de cerebros fetales humanos de 16 a 22 semanas de gestación. La principal diferencia observada fue que los picos de Na+ y K+ eran mayores en los organoides.

Un estudio reciente logró rastrear los cambios en las propiedades electrofisiológicas de organoides cerebrales humanos y contrastarlos con cambios histológicos concurrentes mediante el uso de arrays de multielectrodos de 64 canales. Se detectó una actividad de picos débil en el desarrollo temprano del organoide (día 34 de cultivo), un momento en el que hay una rápida expansión del neuroepitelio y comienza la neurogénesis. Más tarde, después de 64 días de desarrollo, se detectaron aumentos claros tanto en la tasa media de picos como en la amplitud del pico de campo, y esta tendencia continuó hasta el día 99 de cultivo. Más allá de este tiempo, las neuronas corticales desarrollaron potenciales de acción espontáneos característicos con despolarizaciones discretas (días 120 y 160 de cultivo), lo que se alineó con la expansión de los astrocitos.

Los datos inmunohistoquímicos proporcionaron información sobre los cambios corticales que ocurrieron durante este tiempo, como el aumento de la expresión del neurotransmisor ácido gamma-aminobutírico (GABA) entre los días 40 y 120. Además, en el día 86 de cultivo, hubo un aumento significativo de neuronas SATB2+ dentro de las capas expandidas de la placa cortical superior en relación con el día 60, diferenciando así las capas corticales superiores y profundas. En conjunto, esto indica que las grabaciones de los arrays de multielectrodos a mitad del desarrollo del organoide (es decir, 64 y 99 días) surgen de la actividad eléctrica de las neuronas de Cajal-Retzius (es decir, CTIP2+ y SATB2+), mientras que los datos de los arrays de multielectrodos de un desarrollo posterior del organoide (120 y 161 días en cultivo) también incluyen actividad de neuronas GABAérgicas, lo que coincide con un aumento en los marcadores de maduración neuronal (por ejemplo, sinaptofisina).

What is electrophysiological studies in neurology?
Electrophysiology tests that diagnose problems with the nervous system include: Electromyography - The EMG is used to diagnose problems with motor nerve conduction to muscles. Electroenecphalography - The EEG measures activity of brain cells and is used to diagnose brain disorders.

Señalización de Calcio Visualizada por Electrofisiología

Otra aplicación importante de la electrofisiología es la visualización de la señalización de calcio mediante el uso de patch clamping y colorantes fluorescentes. El calcio es una molécula de señalización intracelular que regula múltiples funciones celulares, incluida la excitabilidad celular, la expresión génica en numerosos tipos de tejidos y muchos aspectos del ciclo celular, como la proliferación y la muerte celular.

Con respecto al desarrollo cortical, la imagen de calcio ha permitido la visualización en tiempo real de neuronas que migran radialmente en cortes de cerebelo de ratón, con la frecuencia y amplitud de las oscilaciones de la onda de calcio correlacionadas positivamente con la tasa de migración. Además, las características espaciotemporales de la señalización de calcio se correlacionan de manera similar con la proliferación y migración celular en el neocórtex.

La Actividad Neuronal en el Desarrollo Temprano

La narrativa clásica en neurobiología del desarrollo afirma que la actividad neuronal es importante para el desarrollo y refinamiento de las proyecciones axonales y las conexiones sinápticas, mientras que el desarrollo temprano está en gran medida bajo control genético, con poca influencia de las corrientes neuronales. Sin embargo, esta noción ha sido desafiada en los últimos años.

Un estudio identificó que la actividad neuronal es necesaria para la navegación temprana de las neuronas motoras espinales. Otro estudio identificó patrones distintos de picos de calcio en la especificación del fenotipo de neurotransmisores en neuronas embrionarias de la médula espinal. Además, el papel del neurotransmisor glutamato ha sido dilucidado mediante la generación de ratones que carecen de los transportadores de glutamato GLAST/GLT1.

Numerosos estudios sugieren que el bloqueo del ligando o receptor de glutamato no tiene efectos significativos en el desarrollo debido a mecanismos de señalización compensatorios y de redundancia que enmascaran su importancia. Sin embargo, un estudio más reciente reveló que la acumulación de glutamato extracelular y la subsiguiente sobreestimulación de los receptores de glutamato resultaron en un desarrollo cortical anormal, con efectos sobre la proliferación y migración de células madre, deterioro de la diferenciación neuronal y supervivencia de las neuronas de la subplaca. Este estudio, realizado en el cerebro lisencefálico de ratones, claramente necesita ser extendido a un modelo de cerebro girificado.

Canales Iónicos y Canalopatías

Los canales iónicos (y sus canalopatías asociadas) son particularmente reveladores con respecto al papel de las corrientes eléctricas y su participación en el desarrollo cerebral. La disfunción de los canales iónicos se asocia con diversas enfermedades neurodegenerativas, como la esquizofrenia y la epilepsia.

What does a neuro electrophysiologist do?
A neurophysiologist is a healthcare provider who has expertise in assessing how your nervous system is functioning, especially its electrical activity. They perform tests and diagnose neurological conditions.

En términos de malformaciones corticales, la mutación de varias subunidades de canales de glutamato y sodio, como GluN1 y GluN2 (codificadas por los genes GRIN1 y GRIN2B) y SCN1A, SCN2A y SCN3A (que se expresan altamente postnatalmente en humanos), puede interrumpir el desarrollo cortical cuando mutan. Dado que el proceso de girificación es una combinación de múltiples eventos celulares con importantes características espaciotemporales, puede resultar difícil atribuir específicamente el grado de participación de uno, o incluso una familia de canales iónicos, en el proceso general de desarrollo y plegamiento cortical.

Un Caso Específico: La Canalopatía NaV1.3 (SCN3A)

A pesar de la complejidad, Smith y sus colegas identificaron recientemente una canalopatía NaV1.3 única resultante de mutaciones en el gen SCN3A que provoca un patrón alterado de plegamiento cortical. El canal NaV1.3 mutado resulta en un aumento de la corriente postsináptica persistente, heterotopia neuronal y polimicroglia del córtex perisilviano en humanos, características que también están presentes en el cerebro de hurones con una mutación homóloga.

Curiosamente, los pacientes con esta mutación no suelen presentar epilepsia, a diferencia de los pacientes con síndrome de Dravet, una forma de epilepsia causada en gran medida por mutaciones en SCN1A. Sin embargo, los pacientes con mutaciones en SCN3A sí presentan disfunción prominente del habla y motora oral, lo que implica a SCN3A en el desarrollo prenatal de las áreas del lenguaje cortical humano. Dado que SCN3A se expresa altamente durante el desarrollo temprano en oRG (células gliales radiales externas) y neuronas de nacimiento temprano, quizás no sea sorprendente que la perturbación de aspectos clave de su funcionalidad (en este caso, el canal iónico NaV1.3) tenga efectos posteriores en la migración neuronal y el plegamiento cortical.

El mecanismo por el cual NaV1.3 influye en la proliferación de oRG y la migración neuronal aún no se conoce. Existen varias hipótesis, incluido el cambio en los niveles de flujo de sodio que impacta la regulación transcripcional de las moléculas de superficie involucradas en la migración. Alternativamente, SCN3A puede influir en el microambiente cortical para facilitar la migración neuronal, explicando así la polimicroglia y la heterotopia neuronal en la condición de mutación. También puede ser el caso que el gen SCN3A juegue un papel, independientemente de producir un potencial de acción, en el desarrollo cortical, como lo demostraron los experimentos de patch clamping utilizando neuronas fetales derivadas de humanos, que confirmaron que, aunque las corrientes de sodio están presentes, las neuronas no generan un potencial de acción tras la estimulación. Independientemente, este estudio enfatiza el papel relativamente inexplorado que los canales iónicos y sus corrientes asociadas pueden desempeñar en el proceso de desarrollo cortical y, por lo tanto, en la girificación.

Comparación: Organoides vs. Tejido Fetal

Parámetro ElectrofisiológicoOrganoides CerebralesCortes de Cerebro Fetal Humano (16-22 SG)
Potencial de MembranaSimilarSimilar
Resistencia de MembranaSimilarSimilar
CapacitanciaSimilarSimilar
Picos de Corriente Na+MayoresMenores
Picos de Corriente K+MayoresMenores
Presencia de Neuronas Maduras FuncionalesSí (a partir de 3 meses)
Trenes de Picos Sensibles a TTX

Tabla comparativa basada en hallazgos de Watanabe et al. (2017) y Moore et al. (2009).

Preguntas Frecuentes sobre Electrofisiología Neuronal

Aquí respondemos algunas preguntas comunes sobre este campo:

  • ¿Qué tipo de señales mide la electrofisiología en neurociencia?
    Mide las corrientes eléctricas y los diferenciales de voltaje generados por la actividad de neuronas y otras células del sistema nervioso, como la glía.
  • ¿Cómo ha evolucionado la electrofisiología?
    Ha pasado de usar electrodos simples para medir células individuales a arrays de multielectrodos que permiten registrar simultáneamente cientos de neuronas, facilitando el análisis de redes complejas.
  • ¿Qué es el patch clamping y para qué se utiliza?
    Es una técnica que permite medir corrientes iónicas a través de canales individuales o la actividad eléctrica de una célula completa. Es vital para estudiar la función de los canales iónicos y la señalización de calcio.
  • ¿Puede la electrofisiología ayudar a entender enfermedades neurológicas?
    Sí, la disfunción de los canales iónicos (canalopatías), que se estudia intensamente con electrofisiología, está asociada a enfermedades como la epilepsia y la esquizofrenia, y a malformaciones corticales.
  • ¿Qué papel tiene la actividad eléctrica en el desarrollo temprano del cerebro?
    Contrario a visiones clásicas, estudios electrofisiológicos recientes demuestran que la actividad neuronal es crucial desde etapas tempranas para procesos como la navegación axonal, la especificación de fenotipos de neurotransmisores y el correcto desarrollo cortical.

En resumen, la electrofisiología es una ventana fundamental para observar y comprender el lenguaje eléctrico del sistema nervioso, revelando cómo las células se comunican y cómo esta comunicación da forma a nuestro cerebro y comportamiento, tanto en condiciones normales como patológicas.

Si quieres conocer otros artículos parecidos a Electrofisiología: El Lenguaje Eléctrico Neuronal puedes visitar la categoría Neurociencia.

Foto del avatar

Jesús Porta Etessam

Soy licenciado en Medicina y Cirugía y Doctor en Neurociencias por la Universidad Complutense de Madrid. Me formé como especialista en Neurología realizando la residencia en el Hospital 12 de Octubre bajo la dirección de Alberto Portera y Alfonso Vallejo, donde también ejercí como adjunto durante seis años y fui tutor de residentes. Durante mi formación, realicé una rotación electiva en el Memorial Sloan Kettering Cancer Center.Posteriormente, fui Jefe de Sección en el Hospital Clínico San Carlos de Madrid y actualmente soy jefe de servicio de Neurología en el Hospital Universitario Fundación Jiménez Díaz. Tengo el honor de ser presidente de la Sociedad Española de Neurología, además de haber ocupado la vicepresidencia del Consejo Español del Cerebro y de ser Fellow de la European Academy of Neurology.A lo largo de mi trayectoria, he formado parte de la junta directiva de la Sociedad Española de Neurología como vocal de comunicación, relaciones internacionales, director de cultura y vicepresidente de relaciones institucionales. También dirigí la Fundación del Cerebro.Impulsé la creación del grupo de neurooftalmología de la SEN y he formado parte de las juntas de los grupos de cefalea y neurooftalmología. Además, he sido profesor de Neurología en la Universidad Complutense de Madrid durante más de 16 años.

Subir